هیچ چیز ارزشمند آسان بدست نمی آید.

نوع مقاله : مقاله پژوهشی

نویسندگان

1 دانشجوی دکتری رشته صنایع سلولزی، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ایران

2 دانشیار، گروه چوب و فراورده‌های سلولزی، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ایران،

3 استاد، گروه چوب و فراورده‌های سلولزی، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ایران

4 دانشیار، گروه چوب و فراورده‌های سلولزی، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ایران

چکیده

سابقه و هدف: پکتین پلی‌ساکاریدی چندمنظوره است که کاربرد گسترده‌ای در صنایع غذایی، دارویی و بسته‌بندی دارد. به‌واسطه ویژگی‌های عملکردی ارزشمند، تقاضای جهانی آن بیش از ۳۰ هزار تن در سال برآورد شده و بازار آن سالانه حدود ۴ تا ۵ درصد رشد می‌کند. پوست لیموترش (Citrus aurantifolia)، بخش سفید داخلی (آلبیدو) غنی از پکتین است و می‌تواند منبعی اقتصادی و پایدار برای تولید پکتین باشد. بهره‌برداری از این ضایعات علاوه بر ایجاد ارزش افزوده، به کاهش اثرات زیست‌محیطی ناشی از دفع پسماند کمک می‌کند. روش‌های مرسوم استخراج پکتین مبتنی بر اسیدهای معدنی، اگرچه بازده بالایی فراهم می‌کنند، اما هزینه‌ بالا و چالش‌های ‌زیست‌محیطی را به همراه دارند. در مقابل، اسیدهای آلی همچون سیتریک‌اسید به‌عنوان حلال‌های سبز می‌توانند بازده مطلوبی همراه با کاهش آثار منفی ارائه دهند. بر این اساس، پژوهش حاضر باهدف بهینه‌سازی استخراج اسیدی پکتین از پوست لیموترش برای دستیابی به بیشینه بازده و کیفیت مناسب، شامل خلوص بالا و قابلیت تنظیم درجه متوکسیل انجام شد.
مواد و روش­ ها: آلبیدوی لیموترش پس از جداسازی از میوه تازه، شست‌وشو، خرد شدن و خشک‌کردن در دمای ۵۰ درجه سانتی‌گراد تا رسیدن به وزن ثابت، آسیاب شده و از الک با مش ۲۰ عبور داده شد. برای استخراج اسیدی، ۱۰ گرم از پودر آلبیدو با نسبت ثابت مایع به جامد 30:1 (حجمی/وزنی) در محلول آبی سیتریک‌اسید با سه سطح pH شامل ۱، ۲ و ۳ مخلوط شد و سوسپانسیون حاصل در دماهای ۶۵، ۸۰ و ۹۵ درجه سانتی‌گراد و زمان‌های ۳۰، ۶۰ و ۹۰ دقیقه استخراج گردید. پس از سانتریفیوژ، پکتین با اتانول مطلق رسوب داده شد، سپس با اتانول ۹۶ درصد شست‌وشو و در دمای ۴۰ درجه سانتی‌گراد خشک و سپس پودر شد. طرح آزمایشی باکس–بنکن با سه عامل (دما، زمان و pH) در سه سطح و شامل ۱۵ تیمار طراحی شد. بازده استخراج بر اساس روش توزین محاسبه شد؛ محتوای گالاکتورونیک‌اسید (GalA) با روش رنگ‌سنجی مبتنی بر معرف متاهیدروکسی‌دی‌فنیل و قرائت جذب در ۵۲۰ نانومتر و درجه استری ‌شدن به روش تیترسنجی دو مرحله‌ای (خنثی‌سازی و صابونی‌سازی) تعیین گردید. داده‌ها با مدل چندجمله‌ای درجه دوم در نرم‌افزار Design Expert  نسخه ۱۳ برازش یافتند و مدل مناسب بر اساس آنالیز واریانس، ضریب تبیین، ضریب تبیین تعدیل‌شده و آزمون عدم برازش انتخاب شد.
نتایج: بازده استخراج پکتین به‌طور معنی‌داری تحت تأثیر شرایط فرایندی قرار گرفت و در محدوده‌ای بین 21/8 تا 8/53 درصد متغیر بود. بیشترین بازده در شرایط دمای 80 درجه سانتی‌گراد، زمان 90 دقیقه و pH برابر با ۱ حاصل شد، درحالی‌که کمترین بازده در pH برابر با ۳ و دمای پایین به دست آمد. درجه استری ‌شدن پکتین نیز وابستگی آشکاری به شرایط استخراج نشان داد؛ به‌طوری‌که بیشترین مقدار آن (۱۱/۶۱ درصد) تحت شرایط ملایم‌تر دمای 80 درجه سانتی‌گراد، زمان 30 دقیقه و 3 pH=به دست آمد که معرف تولید پکتین با درجه متوکسیل بالا است. در مقابل، شرایط شدیدتر استخراج مانند 1 pH=همراه بازمان طولانی، سبب کاهش قابل‌توجه DE تا حدود 13/9 درصد و تولید پکتین کم‌ متوکسیل شد. میزان گالاکتورونیک‌اسید نیز تحت تأثیر شدت شرایط استخراج قرار داشت؛ بیشترین خلوص (83/87 درصد) در pH برابر با 3، زمان 30 دقیقه و دمای 80 درجه سانتی‌گراد مشاهده شد، درحالی‌که درpHهای پایین، خلوص پکتین کاهش قابل‌توجهی یافت. مدل‌های رگرسیونی توسعه‌یافته برای بازده، DE  و GalA برازش آماری بسیار مطلوبی داشتند و ضرایب تبیین (R²) بالاتر از ۹۸/۰ مؤید دقت و کارایی مناسب مدل‌ها در توصیف رفتار سیستم استخراج بود.
نتیجه ­گیری: یافته‌های این پژوهش کارآمدی سیتریک‌اسید را به‌عنوان یک حلال سبز و سازگار با محیط‌زیست برای استخراج پکتین از پوست لیموترش تأیید می‌کند. در شرایط بهینه، پکتینی با بازده بالا، خلوص زیاد و درجه استری‌ شده قابل تنظیم حاصل شد. به‌کارگیری روش سطح پاسخ امکان مدل‌سازی دقیق فرایند استخراج را فراهم کرد و تطابق نزدیک داده‌های پیش‌بینی‌شده و تجربی، اعتبار بالای مدل را نشان داد. پکتین تولیدشده با توجه به خلوص زیاد و قابلیت تنظیم میزان متوکسیل، در کاربردهای گسترده‌ای ازجمله صنایع غذایی، دارویی و بسته‌بندی زیست‌پایه قابل استفاده است. استفاده از پوست لیموترش به‌عنوان یک پسماند فراوان صنایع آبلیمو، علاوه بر تأمین منبعی ارزشمند برای تولید پکتین، در راستای توسعه پایدار، مدیریت ضایعات کشاورزی و کاهش اثرات زیست‌محیطی اهمیت دارد. این رویکرد می‌تواند راهکاری مؤثر برای تبدیل پسماندهای گیاهی به محصولات با ارزش افزوده در صنایع وابسته باشد.

کلیدواژه‌ها

موضوعات

-Adetunji, L.R., Adekunle, A., Orsat, V. & Raghavan, V., 2017. Advances in the pectin production process using novel Extraction Techniques: a Review. Food Hydrocolloids, 62, 239–250. https://doi.org/10.1016/ j. foodhyd.2016.08.015.
-Allian, M., Ramasaviny, B. & Emmambuk, M., 2020. Extraction, Characterisation, and Application of Pectin from Tropical and Sub-Tropical Fruits: A Review. Food Reviews International, https://doi.org/ 10.1080/87559129.2020.1733008.
-Canteri-Schemin, M.H., Fertonani, H.C., Waszczynskyj, N. & Wosiacki, G., 2005. Extraction of pectin from apple pomace, Brazilian Archives of Biology and Technology. 48 (2), 259–266, https://doi.org/10.1590/s1516-89132005000200013.
-Chalapud, M.C., Salgado-Cruz, Ma de., Baümler, E.R., Carelli, A.A., Morales-Sanchez, E., Calderon-Domínguez, G. & García-Hernandez, A.B., 2023. Study of the physical, chemical, and structural properties of low- and high-methoxyl pectin-based film matrices including Sunflower Waxes. Membranes, 13 (10), 846, https://doi.org/10.3390/ membranes13100846.
-Chen, J., Liu, W., Liu, C. M., Li, T., Liang, R. H. & Luo, S. J., 2015. Pectin modifications A review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 55(12), 1684–1698. https://doi.org/10.1080/ 10408398.2012. 718722.
-Dubey, P., Tripathi, G., Mir, S. S. & Yousuf, O., 2023. Current scenario and global perspectives of citrus fruit waste as a valuable resource for the development of food packaging film. Trends in Food Science & Technology, 141, Article 104190. https://doi.org/ 10.1016/j.tifs.2023.104190.
-Durán-Aranguren, D.D., Ramírez, C.J., Díaz, L., Valderrama, M.A. & Sierra, R., 2022. Pectins – The New-Old Polysaccharides: Production of Pectin from Citrus Residues. Process Alternatives and Insights on Its Integration under the Biorefinery Concept, http://dx.doi.org/10.5772/intechopen. 100153.
-Ebrahim Zadeh, M. & Zadbakht, M., 2006. Extraction of Pectin and Comparison of Yield, Degree of Esterification and Percentage of Galacturonic Acid in the Skin of Some Citrus. Magazine of Mazandaran University of Medical Sciences, 16 (54),52–59.
-Eça, K.S., Machado, M.T., Hubinger, M.D. & Menegalli, F.C., 2015. Development of active films from pectin and fruit extracts: light protection, antioxidant capacity, and compounds stability. Journal Food Science, 80 (11). https://doi.org/ 10.1111/1750-3841.13074.
-Fissore, E.N., Ponce, N.M., Escalada Pla, M., Stortz, C.A., Rojas, A.M. & Gerschenson, L.N., 2010. Characterization of acid-extracted pectin-enriched products obtained from Red Beet (beta vulgaris l. var. conditiva) and butternut (cucurbita moschata duch ex poiret), Journal Agricultural Food Chemical, 58 (6), 3793–3800. https://doi.org/10. 1021/jf903844b.
-Gharibzahedi, S.M., Smith, B. & Guo, Y., 2019. Ultrasound-microwave assisted extraction of pectin from fig (ficus carica L.) skin: optimization, characterization and bioactivity, Carbohydrate Polymer, 222, 114992. https://doi.org/10.1016 /j.carbpol.2019.114992.
-Hossain, Md., Ara, R., Yasmin, F., Suchi, M. & Zzaman, W., 2024. Microwave and ultrasound assisted extraction techniques with citric acid of pectin from Pomelo (Citrus maxima) peel. Measurement: Food, https://doi.org/10.1016/j. meafoo.2024.100135.
-Hosseini, S.S., Khodaiya, F. & Yarmand, M., 2016. Optimization of microwave assisted extraction of pectin from sour orange peel and its physicochemical properties. Carbohydrate Polymers, http://dx.doi.org/ 10.1016/j.carbpol.2015. 12.051.
-Hosseini, S., Parastouei, K. & Khodaiyan, F., 2020. Simultaneous extraction optimization and characterization of pectin and phenolics from sour cherry pomace. International Journal Biological Macromolecules, 158, 911–921, https://doi.org/ 10.1016/j.ijbiomac.2020.04.241.
-Jesmin Akhter, J., Sarkar, Sh., Tajnuba Sharmin, T. & Chandra Mondal, Sh., 2024. Extraction of pectin from powdered citrus peels using various acids: An analysis contrasting orange with lime. Applied Food Research, 4,100614. https://doi.org/10.1016/j.afres. 2024.100614.
-Kurita, O., Fujiwara, T. & Yamazaki, E., 2008. Characterization of the pectin extracted from citrus peel in the presence of citric acid. Carbohydrate Polymer, 74 (3), 725–730, https://doi.org/10.1016 /j.carbpol.2008.04.033.
-Lasunon, P. & Sengkhamparn, N., 2022. Effect of ultrasound-assisted, microwave-assisted and ultrasound-microwave-assisted extraction on pectin extraction from industrial tomato waste, Molecules, 27 (4), 1157. https://doi.org/10.3390/molecules270 41157.
-Liu, L., Cao, J., Huang, J., Cai, Y. & Yao, J., 2010. Extraction of pectins with different degrees of esterification from Mulberry Branch bark. Bioresource Technological, 101 (9), 3268–3273. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2009.12.062.
-Ma, S., Yu, S., Zheng, X., Wang, X., Bao, Q & Guo, X., 2013. Extraction, characterization and spontaneous emulsifying properties of pectin from Sugar Beet Pulp. Carbohydrate Polymer, 98 (1), 750–753. https://doi.org/10.1016/j.carbpol.2013.06.042.
-Mahmud, M.M., Belal, M., Ahmed, S. & Hoque, M.M., 2021. Zzaman, Microwave-assisted extraction and characterization of pectin from citrus fruit wastes for commercial application. Food Resource, 5 (5), 80–88. https://doi.org/10.26656/fr.2017. 5(5).592.
-Mamiru, D. & Gonfa, G., 2023. Extraction and characterization of pectin from watermelon rind
using acetic acid. Heliyon, 9, 13525. https://doi.org/ 10.1016/j.heliyon.2023.e13525.
-Martau, G.A., Mihai, M. & Vodnar, D.C., 2019. The use of chitosan, alginate, and pectin in the biomedical and food sector—biocompatibility, bio adhesiveness and biodegradability. Polymers, 11 (11), 1837. https://doi.org/10.3390/polym11111837.
-Marwa Mahmoud, F.M. Abu-Salem, D.E. & Azab., 2022. A comparative study of pectin green extraction methods from Apple Waste: characterization and functional properties. SSRN Electron. Journal. https://doi.org/10.2139/ssrn. 4005101.
-Mellinas, C., Ramos, M., Jimenez, A. & Garrigos, M.C., 2020. Recent trends in the use of pectin from agro-waste residues as a natural-based biopolymer for food packaging applications. Materials, 13 (3), 673. https://doi.org/10.3390/ma13030673.
-Mosayebi, V. & Emam Djomeh, Z., 2017. Optimization of ultrasound assisted extraction of pectin from black mulberry (Morus nigra.L) pomace. Iranian Food Science and Technology Research Journal, 13 (4), 594-610. https://doi.org/10.22067/ifstrj.v1395i0.504 66.
-Oliveira, T.T., Rosa, M.F., Cavalcante, F.L., Pereira, P.H., Moates, G.K., Wellner, N., Mazzetto, S.E., Waldron, K.W. & Azeredo, H.M.C., 2016. Optimization of pectin extraction from banana peels with citric acid by using response surface methodology. Food Chemical, 198, 113–118, https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2015.08.080.
-Pei, Ch., Hsien, T, Sh., Hsuan, F, Sh., Hsuan, H, L., Chi, Ch. & Yi, M, L., 2024. Microwave- and Ultrasound-Assisted Extraction of Pectin Yield and Physicochemical Properties from Lemon Peel. Journal of Agriculture and Food Research, https://doi.org/10.1016/j.jafr.2024.101009.
-Pereira, P.H., Oliveira, T.´I. N., Waldron, W. & Azeredo. H.M.C., 2016. Pectin extraction from pomegranate peels with citric acid. International Journal Biological Macromolecule, 88, 373–379, https://doi.org/10.1016/j. ijbiomac.2016.03.074.
-Pinheiro, E.R., Silva, I.M.D.A., Gonzaga, L.V., Amante, E.R., Te´ofilo, R.F., Ferreira, M.M. C. & Amboni, R.D.M.C., 2008. Optimization of extraction of high-ester pectin from passion fruit peel (passiflora edulis flavicarpa) with citric acid by using response surface methodology. Bioresource Technology, 99 (13), 5561–5566. https://doi.org/10.1016/j.biortech.2007. 10.058.
-Wai, W.W., Alkarkhi, A.F.M. & Easa, A.M., 2010. Effect of extraction conditions on yield and degree of esterification of Durian Rind pectin: an experimental design. Food Bioproduction Process, 88 (2–3), 209–214. https://doi.org/10.1016/j.fbp.2010.01.010.
-Xu, F., Zhang, S., Waterhouse, G. I. N., Zhou, T., Du, Y., Sun-Waterhouse, D. & Wu, P., 2022. Yeast fermentation of apple and grape pomaces affects subsequent aqueous pectin extraction: Composition, structure, functional and antioxidant properties of pectins. Food Hydrocolloid, 133,107945. https://doi.org/10.1016/j.foodhyd.2022.107945.
-Yapo, B.M., Robert, C., Etienne, I., Wathelet, B. & Paquot, M., 2008. Effect of extraction conditions on the yield, purity and surface properties of sugar beet pulp pectin extracts. Food Chemical, 100 (4), 1356–1364. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2005.12. 012.